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premier5。0軟件設計引物序列 - 如何用primer

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進入軟件genetank窗口file---new----DNA sequence進入序列輸入版塊control+v輸入序列改變序列選擇AS菜單 進入primer引物設計進入search點OK系統自引物 選需要(評)要克隆基則primer菜單手設計

Premier 的主要功能分四大塊,其中有三種功能較常用,即引物設計(primer),酶切點分析( enzyme),基元查找( motif)。該軟件還有別的一些功能,如序列”朗讀”,DNA 與蛋白序列的互換(protein),發聲提示鍵盤輸入等,但其中最優秀的卻是能設計簡併引物。下面介紹用primer premier5.0軟件設計引物序列的方法。

方法

Premier 軟件的起動並打開一段序列後,界面如圖所示。其主要功能在主界面上一目瞭然(按鈕功能如上述)。酶切點分析及基元查找功能比較簡單,點擊該功能按鈕後,選擇相應的酶或基元(如-10 序列,-35 序列等),按“確定”即可。常見的酶和基元一般都可以找到。你還可以編輯或者添加新酶或基元。

打開primer premier 5.0——File——New—— DNA Sequence——COPY 特異序列到GeneTank——Primer——Search——PCR Primers,Pairs—— 設定Sense primer和Antisense primer的範圍及PCR產物大小範圍——設定引物長度(primer length)——Automatic——OK——Search com

如何用primer premier5.0軟件設計引物序列

進行引物設計時,點擊“primer”按鈕,界面如圖所示。

如果你要擴展的基因已經測序完成,你在網上找到序列,輸入primer5,然後點primer就可以了,然後你可以手動或自動更改,知道達到的你的要求。 如果你擴增的基因還未測序完成,你只能通過別人克隆出來的相關基因設計引物,方法同上

如何用primer premier5.0軟件設計引物序列 第2張

進一步點擊“search”按鈕,出現 search criteria 窗口,有多種參數以調整。搜索目的(Seach For)有三種選項,PCR 引物(PCR Primers),測序引物(Sequencing Primers),雜

設計好後,點左上角的“edit”,再點“copy”,然後選擇正向引物或反向引物,點擊後就已經複製到剪切板裏了。然後打開word、txt或者exel文件,直接ctrl+V粘貼即可。 ————————————————————————save to database是存入了PP5自己的數據庫中。

交探針(Hybridization Probes)。搜索類型(Search Type)可選擇上、下游引物(Sense/Anti-sense Primer)都分別查找(Both),或者成對查找(Pairs),或者分別以適合上、下游引物為主

引物設計是PCR技術中至關重要的一環,專門進行引物設計的商業軟如件Oligo 6和Primer Premier 5.0功能強大,但使用起來不容易。在生物幫上有文檔就這一問題進行分析和探討,幫助有需要的人最快熟悉和掌握引物設計的技巧。你可以找到,看一下。生

(Compatible With Sense/Anti-sense Primer)。另外還可改變選擇區域(Search Ranges),引物長度(Primer Length),選擇方式(Search Mode),參數選擇(Search Parameters)等等。研究人員可根據自己的需要設定各項參數。如果沒有特殊要求,建議使用默認設置。然後按“OK”,隨之出現的 Search Progress 窗口中顯示 Search Completed 時,再按“OK” ,

怎樣在用primer premier 5.0設計PCR引物時加入酶切位點 首頁 問題 全部問題 經濟金融 企業管理 法律法規 社會民生 科學教育 健康生活 體育運動 文化

這時搜索結果以表格的形式出現,有三種顯示方式,上游引物(Sense),下游引物(Anti-sense),

這個用primer5是計算不出來的,把引物放在NCBI上做一個primer blast,可以搜索到引物擴增產物的序列和長度

成對顯示(Pairs)。

設計好後,點左上角的“edit”,再點“copy”,然後選擇正向引物或反向引物,點擊後就已經複製到剪切板裏了。然後打開word、txt或者exel文件,直接ctrl+V粘貼即可。 ————————————————————————save to database是存入了PP5自己的數據庫中。就像這樣:

如何用primer premier5.0軟件設計引物序列 第3張

默認顯示為成對方式,並按優劣次序(Rating)排列,滿分為 100,即各指標都能達標,如圖所示。

打開primer premier 5.0——File——New—— DNA Sequence——COPY 特異序列到GeneTank——Primer——Search——PCR Primers,Pairs—— 設定Sense primer和Antisense primer的範圍及PCR產物大小範圍——設定引物長度(primer length)——Automatic——OK——Search com。

如何用primer premier5.0軟件設計引物序列 第4張

點擊其中一對引物,如第 1#引物,並把上述窗口挪開或退出,顯示 Peimer Premier 主窗口,如圖所示。該圖分三部分,最上面是圖示 PCR 模板及產物位置,中間是所選的上下游引物的一些性質,最下面是四種重要指標的分析,包括髮夾結構(Hairpin),二聚體(Dimer),錯誤引發情況(False Priming),及上下游引物之間二聚體形成情況(Cross Dimer)。

oligo最新版本是 oligo7 很好用 pp6 oligo7貌似都得算號器安裝吧 不麻煩的

如何用primer premier5.0軟件設計引物序列 第5張

當所分析的引物有這四種結構的形成可能時,按鈕由“None”變成“Found” ,點擊該按鈕,在左下角的窗口中就會出現該結構的形成情況。一對理想的引物應當不存在任何一種上述結構,因此最好的情況是最下面的分析欄有“Found” ,只有 “None”。值得注意的是中間一欄的末尾給出該引物的最佳退火温度,可參考應用。有時需要對引物進行修飾編輯,如在 5’端加入酶切點,可點擊“Edit Primers”,然後修改引物序列。若要回到搜索結果中,則點擊“Results”按鈕。

引物設計有3 條基本原則:首先引物與模板的序列要緊密互補,其次引物與引物之間避免形成穩定的二聚體或髮夾結構,再次引物不能在模板的非目的位點引發DNA 聚合反應(即錯配)。引物設計應注意如下要點: 1 引物的長度一般為15-30 bp,常用的是18-2

如何用primer premier5.0軟件設計引物序列 第6張

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哪種PCR引物設計軟件好用啊?

oligo最新版本是 oligo7 很好用

pp6 oligo7貌似都得算號器安裝吧 不麻煩的追問pp6與oligo7哪個設計引物好一點呀,我有oligo7,但下載的pp6沒安裝上追答我以前一直用的pp5設計檢測引物,pp5的搜索功能很強大

用oligo6在固定位置設計引物,oligo系列的分析能力很強大 界面也很直觀

但是到oligo7發佈 徹底拋棄pp系列了 oligo7的搜索功能有很大改進 界面卻很顛覆,相對之前的版本,需要適應適應。

聽説pp系列能連接ncbi數據庫進行引物特異性分析 倒是沒用過 不知道oligo系列有沒有這個功能

都是相當好的軟件,各有特色 對於普通用户 更多是習慣問題

用primer premier 5.0設計引物時怎麼消除二聚體

你不能通過軟件使可能形成二聚體的引物不形成二聚體,只能重新設計別引物

如何用Primer Premier5 檢驗已有引物啊?

引物設計有3 條基本原則:首先引物與模板的序列要緊密互補,其次引物與引物之間避免形成穩定的二聚體或髮夾結構,再次引物不能在模板的非目的位點引發DNA 聚合反應(即錯配)。引物設計應注意如下要點:

1 引物的長度一般為15-30 bp,常用的是18-27 bp,但不應大於38,因為過長會導致其延伸温度大於74℃,不適於Taq DNA 聚合酶進行反應。

2 引物序列在模板內應當沒有相似性較高,尤其是3’端相似性較高的序列,否則容易導致錯配。引物3’端出現3 個以上的連續鹼基,如GGG 或CCC,也會使錯誤引發概率增加[2]。

3 引物3’端的末位鹼基對Taq 酶的DNA 合成效率有較大的影響。不同的末位鹼基在錯配位置導致不同的擴增效率,末位鹼基為A 的錯配效率明顯高於其他3 個鹼基,因此應當避免在引物的3’端使用鹼基A[3][4]。另外,引物二聚體或髮夾結構也可能導致PCR 反應失敗。5’端序列對PCR 影響不太大,因此常用來引進修飾位點或標記物[2]。

4 引物序列的GC 含量一般為40-60%,過高或過低都不利於引發反應。上下游引物的GC含量不能相差太大。

5 引物所對應模板位置序列的Tm 值在72℃左右可使復性條件最佳。Tm 值的計算有多種方法,如按公式Tm=4(G+C)+2(A+T),在Oligo 軟件中使用的是最鄰近法(the nearest neighbor method)。

6 ∆G 值是指DNA 雙鏈形成所需的自由能,該值反映了雙鏈結構內部鹼基對的相對穩定性。應當選用3’端∆G 值較低(絕對值不超過9),而5’端和中間∆G 值相對較高的引物。引物的3’端的∆G 值過高,容易在錯配位點形成雙鏈結構並引發DNA 聚合反應[6]。

7 引物二聚體及髮夾結構的能值過高(超過4.5kcal/mol)易導致產生引物二聚體帶,並且降低引物有效濃度而使PCR 反應不能正常進行[8]。

8 對引物的修飾一般是在5’端增加酶切位點,應根據下一步實驗中要插入PCR 產物的載體的e69da5e887aae799bee5baa6e997aee7ad9431333262346436相應序列而確定。

參考資料:http://www.biox.cn/content/20050513/13048.htm

誰會用primer premier6.0設計引物啊。具體步驟{最好有截圖}一步一步。有幫助的話,我再獎勵50分。拜託。

手頭百的電腦沒裝。。。如果沒記錯的話 new sequence---DNA sequence---as it is---research primer---設置引度物位置範圍和產專物長度----出來打分的引物---edit裏面點copy 然後屬出來粘貼上

如何用 primer premier5 設計簡併引物,可否給個詳細流程。謝謝

用什麼軟件設計都一樣啊 只是要找到保守區域而已吧